ОХНМКоординационная химия Russian Journal of Coordination Chemistry

  • ISSN (Print) 0132-344X
  • ISSN (Online) 3034-5499

Взаимодействие лиофильных цинк(II)порфиринов с бычьим сывороточным альбумином

Код статьи
10.31857/S0132344X24060034-1
DOI
10.31857/S0132344X24060034
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 50 / Номер выпуска 6
Страницы
374-384
Аннотация
Проведено палладий-каталитическое гетерелирование монобромфенилзамещенного порфирината цинка(II) малыми гетероциклами (бензотиазолом, бензоксазолом, N-метилбензимидазолом). В результате получены и идентифицированы органорастворимые несимметричные гетерилфенилзамещенные порфиринаты цинка(II). Спектральными методами изучено взаимодействие гетерилзамещенных порфиринатов цинка(II) с альфаспиральными белками на примере бычьего сывороточного альбумина в водно-органическом растворителе. Установлено, что при титровании исследуемых цинк(II)порфиринов альбумином в натрий-фосфатном буфере реализуется ряд равновесий, включая комплексообразование и агрегацию. Для порфиринов, содержащих остатки N-метилбензимидазола и бензоксазола, доминируют процессы самоагрегации, инициируемые поглощением белком молекул органического растворителя. Установлено, что более гидрофобный характер цинк(II)порфирина с остатком бензотиазола способствует протеканию процессов комплексообразования с белком. Показано, что фотохимические свойства цинк(II)порфирина с остатком бензотиазола, способность к фотоокислению альфаспирального белка, высокое сродство белка к указанному порфирину делают его перспективным кандидатом для оценки использования в фотодинамической инактивации.
Ключевые слова
цинк(II)порфирины гетерилзамещенные порфирины синтез белок комплекс фотоинактивация
Дата публикации
10.06.2024
Год выхода
2024
Всего подписок
0
Всего просмотров
10

Библиография

  1. 1. Mancuso G., Midiri A., Gerace E. et al. // Pathogens. 2021. V. 10. P. 1310. https://doi.org/10.3390/pathogens10101310
  2. 2. Urban-Chmiel R., Marek A., Stepie´n-Pysniak D. et al. //Antibiotics. 2022. V. 11. № 8. P. 1079. https://doi.org/10.3390/antibiotics11081079
  3. 3. Ten threats to global health in 2019 // World Health Organization. 2019. V. 22. P. 2021. https://www.who.int/news-room/spotlight/ten-threats-to-global-health-in-2019
  4. 4. Kenawy E.R., Worley S.D., Broughton R. // Biomacromolecules. 2007. V. 8. № 5. P. 1359. https://doi.org/10.1021/bm061150q
  5. 5. Stojiljkovic I., Evavold B.D., Kumar V. // Expert opinion on investigational drugs. 2001. V. 10. № 2. P. 309. https://doi.org/10.1517/13543784.10.2.309
  6. 6. König K., Teschke M., Sigusch B. et al. // Cellular Mol. Biol. 2000. V. 46. № 7. P. 1297.
  7. 7. Lebedeva N.S., Gubarev Y.A., Koifman M.O. et al. // Molecules. 2020. V.25. P. 4368 https://www.mdpi.com/1420-3049/25/19/4368
  8. 8. Lebedeva N.S., Koifman O.I. // Russ. J. Bioorg. Chemi. 2022. V. 48. №. 1. P. 1. https://doi.org/10.1134/S1068162022010071
  9. 9. Koifman O.I., Ageeva Т.А., Beletskaya I.P. et al. // Macroheterocycles. 2020. V. 13. № 4. P. 183. https://doi.org/10.6060/mhc200814k
  10. 10. Koifman O.I., Ageeva T.A., Kuzmina N. S. et al. // Macroheterocycles. 2022. V. 15. № 4. P. 207. DOI: 10.6060/mhc224870k
  11. 11. Kiselev A.N., Lebedev M.A., Syrbu S.A. et al. // Russ. Chem. Bull. V. 71. № 12. P. 2691. https://doi.org/10.1007/s11172-022-3698-5
  12. 12. Lebedeva N.S., Yurina E.S., Gubarev Y.A. et al. //Mendeleev Commun. 2017. V. 27. № 1. P. 47-49. https://doi.org/10.1016/j.mencom.2017.01.014
  13. 13. Lebedeva N.S., Yurina E.S., Gubarev Y.A. et al. // J. Inclus. Phenom. Macrocycl. Chem. 2019. V. 95. № 3–4. P. 199. https://doi.org/10.1007/s10847-019-00947-1.
  14. 14. Yurina E.S., Gubarev Y.A., Kiselev A.N. et al. // Mendeleev Commun. 2020. V. 30. № 2. P. 211. https://doi.org/10.1016/j.mencom.2020.03.027
  15. 15. Lebedeva N.S., Yurina E.S., Gubarev Y.A. et al. // Spectrochim. Acta. A.2021. V. 246. P. 118975. https://doi.org/10.1016/j.saa.2020.11897.5
  16. 16. Lebedeva N.S., Yurina E.S., Gubarev Y.A. et al. // Russ. J. Gen. Chem. 2019. V. 89. P. 565. https://doi.org/10.1134/S1070363219030368
  17. 17. Ogunsipe A., Nyokong T. // J. Mol. Struct. 2004. V.689. P.89. https://doi.org/10.1016/j.molstruc.2003.10.024
  18. 18. Ormond A.B., Freeman H.S. // Dyes Pigments. 2013. V. 96. № 2. P. 440. https://doi.org/10.1016/j.dyepig.2012.09.011
  19. 19. Figueiredo T.L.C. Johnstone, R. A., Sørensen, A.M.S. et al. // Photochem. Photobiol. 1999. V. 69. № 5. P. 517. https://doi.org/10.1111/j.1751-1097.1999.tb03322.x
  20. 20. Лебедева Н.Ш., Малькова Е.А., Губарев Ю.А. и др. // Ученые записки Петрозаводского гос. ун-та. 2014. Т. 1. № 8 (145). С. 12.
  21. 21. Rothemund P., Menotti A.R. // J. Am. Chem. Soc. 1948. V. 70. № 5. P. 1808. https://doi.org/10.1021/ja01185a047
  22. 22. Kiselev A.N., Syrbu S.A., Lebedeva N.Sh. et.al. // Inorganics. 2022. V. 10. № 63. P. 1. https://doi.org/10.3390/inorganics10050063
  23. 23. Akins D.L., Özçelik S., Zhu H. R. et al. // J. Phys Chem. 1996. V. 100. № 34. P. 14390. https://doi.org/10.1021/jp961013v
  24. 24. Ghosh M., Nath S., Hajra A. et al. // J. Lumin. 2013. V. 141. P. 87. https://doi.org/10.1016/j.jlumin.2013.03.025
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека